Zespoły badawcze

Projekty naukowe

  • Projekty obecnie realizowane w katedrze

    Rola ekspresji i modyfikacji tRNA w translacji w chloroplastach podczas stresu
    lata realizacji: 2021 – 2025
    Kierownik: P. Gawroński
    NCN, Sonata Bis 11; kwota dofinansowania: 2 652 400 zł

    Regulacja temperatury liści i jej rola w warunkowej optymalizacji procesu fotosyntezy oraz powstawania retroaktywnych sygnałów dla śmierci komórki i systemowej nabytej aklimatyzacji u Arabidopsis
    lata realizacji: 2021 – 2025
    Kierownik: S. Karpiński
    NCN, Opus 20; kwota dofinansowania: 2 365 580 zł

    Identyfikacja i charakterystyka genów warunkujących tolerancję niedoboru fosforu u żyta (Secale cereale L) – rośliny o wysokiej tolerancji niedoboru składników pokarmowych
    lata realizacji: 2021 – 2025
    Kierownik: H. Bolibok-Brągoszewska
    NCN, Opus 19; kwota dofinansowania: 1 682 580 zł

    Integracja danych multi-omicznych ogórka w celu identyfikacji mechanizmów determinacji płci i ich uwarunkowań klimatycznych
    lata realizacji: 2021 – 2025
    Kierownik: M. Pawełkowicz
    NCN, Opus 19; kwota dofinansowania: 1 779 300 zł

    Regulacja autofagii w komórkach korzenia rzodkiewnika pospolitego (Arabidopsis thaliana) zaatakowanych przez mątwika burakowego (Heterodera schachtii)
    lata realizacji: 2021 – 2022
    Kierownik: M.S. Matuszkiewicz
    NCN, Miniatura 5; kwota dofinansowania: 49 500 zł

    Rola metakaspazy 8 (AtMc8) w regulacji śmierci komórki zależnej od LSD1
    lata realizacji: 2021 – 2022
    Kierownik: M.J. Bernacki
    NCN, Miniatura 4; kwota dofinansowania: 49 500 zł

    Wykorzystanie naturalnej zmienności w poszukiwaniu genów przydatnych do hodowli odpornościowej na przędziorki
    lata realizacji: 2019 – 2022
    Kierownik: M. Filipecki
    NCN, Opus 17; kwota dofinansowania: 2 399 000 zł

    Identyfikacja, charakterystyka i mapowanie genomów żyta zwyczajnego (Secale cereale L.) zwiazanych z odpornością na rdzę brunatną powodowaną przez Puccinia recondita f.sp.secalis.
    lata realizacji: 2019 – 2022
    Kierownik: M. Rakoczy-Trojanowska
    NCN, Opus 16; kwota dofinansowania: 2 335 900 zł

    Nowa rola chloroplastów oraz PsbS – zależnego niefotochemicznego wygaszania zaabsorbowanej energii oraz regulonu LSD1 w retroaktywnych sygnałach śmierci komórki komórki, świetlnej pamięci komórkowej i krzyżowej tolerancji na promieniowanie UV u Arabidopsis
    lata realizacji: 2019 – 2022
    Kierownik: S. Karpiński
    NCN, Opus 15; kwota dofinansowania: 2 623 120 zł

    Reakcja rośliny na kombinację stresów biotycznego i abiotycznego
    lata realizacji: 2018 – 2021
    Kierownik: M. Filipecki
    NCN, Opus 13; kwota dofinansowania: 1 056 000 zł

    Regulacja elongacji translacji w chloroplastach przez reaktywne formy tlenu, status redoks i gradient protonowy
    lata realizacji: 2017 – 2020
    Kierownik: P. Gawroński
    NCN, Sonata; kwota dofinansowania: 692 090 zł

    Rola retroaktywnych sygnałów chloroplastowych w zależnej od miRNA odpowiedzi roślin na stres świetlny
    lata realizacji: 2017 – 2020
    Kierownik: A. Barczak-Brzyżek
    NCN, Preludium; kwota dofinansowania: 150 000 zł

    Zintegrowana strategia dla reaktywacji hodowli pszenicy heterozyjnej
    lata realizacji: 2017 – 2020
    Kierownik: M. Rakoczy-Trojanowska
    NCBiR, BIOSTRATEG 3; kwota dofinansowania: 2 256 707 zł

  • Projekty zakończone

    Sekwencjonowanie i analiza porównawcza genomów szczepów Pseudomonas syringae wywołujących bakteryjną kanciastą plamistość ogórka (Cucumis sativus L.)
    lata realizacji: 2020
    Kierownik: R. Słomnicka
    NCN, Miniatura 3; kwota dofinansowania: 50 000 zł

    Korelacja faz rozwojowych pąków kwiatowych linii żeńskiej oraz trójjednopiennej z lokalizacją transkrypcji genu płci CsWIP1
    lata realizacji: 2019
    Kierownik: E. Siedlecka
    NCN, Miniatura; kwota dofinansowania: 50 000 zł

    Ocena linii i mieszańców cukinii i dyni bezłupinowej w doświadczeniu polowym
    lata realizacji: 2019
    Kierownik: G. Bartoszewski
    KZL; kwota dofinansowania: 61 500 zł

    Ocena wybranych linii pomidorów i mieszańców rzodkiewki w doświadczeniach polowych
    lata realizacji: 2019
    Kierownik: G. Bartoszewski
    KZL; kwota dofinansowania: 61 500 zł

    Ocena linii i mieszańców rzodkiewki w doświadczeniu polowym i pod osłonami
    lata realizacji: 2018
    Kierownik: K. Niemirowicz-Szczytt
    KZL; kwota dofinansowania: 61 500 zł

    Ocena linii i mieszańców arbuza w doświadczeniu polowym i pod osłonami
    lata realizacji: 2018
    Kierownik: K. Niemirowicz-Szczytt
    KZL; kwota dofinansowania: 61 500 zł

    Molekularna identyfikacja szlaków sygnalnych uruchamianych przez kinazę receptorową CRK5 w procesach starzenia i odpowiedzi na stres u Arabidopsis thaliana.
    lata realizacji: 2017 – 2020
    Kierownik: P. Burdiak
    NCN, Sonata; kwota dofinansowania: 683 800 zł

    Genetyczne i środowiskowe uwarunkowania regulacji biosyntezy benzoksazynoidów – kluczowych metabolitów wtórnych żyta (Seceale cereale L.)
    lata realizacji: 2016 – 2019
    Kierownik: M. Rakoczy-Trojanowska
    NCN, Opus 10; kwota dofinansowania: 821 400 zł

    Inteligentne systemy hodowli i uprawy pszenicy, kukurydzy i topoli dla zoptymalizowanej produkcji biomasy, paliw oraz zmodyfikowanego drewna
    lata realizacji: 2016 – 2019
    Kierownik: S. Karpiński
    NCBiR, BIOSTRATEG 2; kwota dofinansowania: 20 662 936 zł

    Dynamika proteomu korzeni pomidora podczas ataku mątwika ziemniaczanego
    lata realizacji: 2016 – 2019
    Kierownik: M. Filipecki
    NCN, Opus 9; kwota dofinansowania: 1 086 000 zł

    Prowadzenie i ocena kolekcji zasobów genowych roślin dyniowatych
    lata realizacji: 2015 – 2020
    Kierownik: K. Niemirowicz-Szczytt
    MRiRW; kwota dofinansowania: 798 295 zł

    Doskonalenie ogórka (Cucumis sativus L.) pod względem odporności na kanciastą plamistość
    lata realizacji: 2015 – 2019
    Kierownik: G. Bartoszewski
    MRiRW; kwota dofinansowania: 57 620 zł

    Wpływ selekcji na genom rośliny uprawnej – identyfikacja i charakterystyka sekwencji, na które nakierowana była presja selekcyjna w trakcie udomowienia i hodowli żyta (Secale cereale L.).
    lata realizacji: 2015 – 2020
    Kierownik: H. Bolibok-Brągoszewska
    NCN, Sonata BIS 4; kwota dofinansowania: 1 834 141 zł

    Nowe molekularne i komórkowe mechanizmy śmierci komórki zależne od chloroplastowych retrosygnałów oraz ich znaczenie w regulacji produktywności i odporności na stresy środowiskowe u Arabidopsis thaliana
    lata realizacji: 2015 – 2020
    Kierownik: S. Karpiński
    NCN, MAESTRO 6; kwota dofinansowania: 2 723 686 zł

    Inteligentne systemy oświetleniowe dla przemysłowej produkcji roślinnej
    lata realizacji: 2015 – 2018
    Kierownik: S. Karpiński
    NCBiR, PBS 3; kwota dofinansowania: 1 435 862 zł

    Zależność reakcji roślin na nicienie pasożytnicze od genetycznej kontroli programowanej śmierci komórkowej
    lata realizacji: 2015 – 2018
    Kierownik: M. Filipecki
    NCN, Opus 7; kwota dofinansowania: 1 217 000 zł

    Hakowanie fotosyntezy, czyli nanocząstki w służbie zielonej energii
    lata realizacji: 2015
    Kierownik: M. Górecka
    FNP; kwota dofinansowania: 80 000 zł

    Genomiczne i transkryptomiczne konsekwencje różnych metod generowania zmienności u ogórka
    lata realizacji: 2014 – 2017
    Kierownik: W. Pląder
    NCN, Opus 6; kwota dofinansowania: 1 240 277 zł

    Identyfikacja i analiza funkcjonalna genów kodujących potencjalne czynniki biorące udział w retroaktywnych sygnałach z chloroplastów do jądra podczas odpowiedzi obronnych i aklimatyzacyjnych u Arabidopsis
    lata realizacji: 2014 – 2016
    Kierownik: S. Karpiński
    NCN, Opus 6; kwota dofinansowania: 1 815 180 zł

    Analiza międzykomórkowych foto-elektrofizjologicznych sygnałów, ekspresji peroksydazy askorbinianowej 2, niefotochemicznego wygaszania energii wzbudzenia i ich roli w zintegrowanej odpowiedzi na stresy u Arabidopsis
    lata realizacji: 2013 – 2016
    Kierownik: S. Karpiński
    NCN, Opus 4; kwota dofinansowania: 752 190 zł

    Wykorzystanie linii topoli o zwiększonym potencjale przyrostu biomasy i ulepszonej kompozycji chemicznej drewna w technologii produkcji papieru i biopaliw
    lata realizacji: 2013 – 2016
    Kierownik: M. Szechyńska-Hebda
    NCBiR, PBS 2; kwota dofinansowania: 3 797 400 zł

    Rola małych RNA w odpowiedzi pomidora na atak i żerowanie mątwika ziemniaczanego
    lata realizacji: 2013 – 2016
    Kierownik: M. Koter
    NCN, Opus 4; kwota dofinansowania: 430 000 zł

    Wytworzenie i molekularna charakterystyka materiałów wyjściowych do hodowli odmian heterozyjnych pszenicy
    lata realizacji: 2013 – 2015
    Kierownik: M. Rakoczy-Trojanowska
    Poznańska Hodowla Roślin; kwota dofinansowania: 581 544 zł

    Opracowanie markerów molekularnych przeznaczonych do efektywnej selekcji form żyta zwyczajnego (Secale cereale L.) o podwyższonej odporności na choroby oraz porastanie przedżniwne
    lata realizacji: 2012 – 2016
    Kierownik: M. Rakoczy-Trojanowska
    NCBiR, PBS 1; kwota dofinansowania: 1 585 318 zł

    WULS Plant Health Regpot
    lata realizacji: 2012 – 2015
    Kierownik: M. Filipecki
    UE FP7;

    Eksploracja regionów bogatych w geny u gatunku o dużym genomie (Secale cereale L.) z wykorzystaniem markerów DArT
    lata realizacji: 2012 – 2015
    Kierownik: H. Bolibok-Brągoszewska
    NCN, Opus 2; kwota dofinansowania: 634 093 zł

     

  • Projekty finansowane z budżetu Państwa

    Zadanie badawcze dofinansowane ze środków Ministerstwa Rolnictwa i Rozwoju Wsi

    Doskonalenie ogórka (Cucumis sativus L.) pod względem odporności na kanciastą plamistość

    realizowane w ramach badań podstawowych na rzecz postępu biologicznego w produkcji roślinnej w latach 2015-2019

    Informacje o zadaniu


    Działanie badawcze dofinansowane ze środków Ministerstwa Rolnictwa i Rozwoju Wsi

    Prowadzenie i ocena kolekcji zasobów genowych roślin dyniowatych

    realizowane w ramach zadania 1.3 programu wieloletniego pt.
    „Tworzenie naukowych podstaw postępu biologicznego i ochrona roślinnych zasobów genowych źródłem innowacji i wsparcia zrównoważonego rolnictwa oraz bezpieczeństwa żywnościowego kraju”
    realizowanego w latach 2015-2020 przez Instytut Hodowli i Aklimatyzacji Roślin PIB w Radzikowie i Instytut Ogrodnictwa w Skierniewicach

    Informacje o zadaniu

Publikacje naukowe

  • 2021

    1. Tyrka, M., Mokrzycka, M., Bakera, B., Tyrka, D., Szeliga, M., Stojałowski, S., … & Krajewski, P. (2021). Evaluation of genetic structure in European wheat cultivars and advanced breeding lines using high-density genotyping-by-sequencing approach. BMC Genomics22(1), 1-17.

  • 2020

    1. Bakera, B., Rakoczy-Trojanowska, M. (2020). Isolation and structural analysis of the Bx6 and Bx7 genes controlling the biosynthesis of benzoxazinoids in rye (Secale cereale L.). Acta Physiol Plant42(4), 1-9.

    2. Bakera, B., Święcicka, M., Stochmal, A., Kowalczyk, M., Bolibok, L., Rakoczy-Trojanowska, M. (2020). Benzoxazinoids biosynthesis in rye (Secale cereale L.) is affected by low temperature. Agronomy10(9), 1260.

    3. Bernacki, M. J., Czarnocka, W., Zaborowska, M., Różańska, E., Labudda, M., Rusaczonek, A., … & Karpiński, S. (2020). EDS1-dependent cell death and the antioxidant system in arabidopsis leaves is deregulated by the mammalian bax. Cells9(11), 2454.

    4. Czarnocka, W., Fichman, Y., Bernacki, M., Różańska, E., Sańko-Sawczenko, I., Mittler, R., & Karpiński, S. (2020). FMO1 Is Involved in Excess Light Stress-Induced Signal Transduction and Cell Death Signaling. Cells9(10), 2163.

    5. Czarnocka, W., Rusaczonek, A., Willems, P., Sujkowska-Rybkowska, M., Van Breusegem, F., Karpiński, S. (2020). Novel Role of JAC1 in Influencing Photosynthesis, Stomatal Conductance, and Photooxidative Stress Signalling Pathway in Arabidopsis thaliana. Front Plant Sci11, 1124.

    6. Gawroński, P., Burdiak, P., Scharff, L. B., Mielecki, J., Górecka, M., Zaborowska, M., … & Karpiński, S. (2020). CIA2 and CIA2‐LIKE are required for optimal photosynthesis and stress responses in Arabidopsis thaliana. Plant Jhttps://doi.org/10.1111/tpj.15058

    7. Gawroński, P., Pałac, A., & Scharff, L. B. (2020). Secondary Structure of Chloroplast mRNAs In Vivo and In Vitro. Plants9(3), 323.

    8. Górecka, M., Lewandowska, M., Dąbrowska‐Bronk, J., Białasek, M., Barczak‐Brzyżek, A., Kulasek, M., … & Karpiński, S. (2020). Photosystem II 22kDa protein level‐a prerequisite for excess light‐inducible memory, cross‐tolerance to UV‐C and regulation of electrical signalling. Plant Cell Environ43(3), 649-661.

    9. Hawliczek, A., Bolibok, L., Tofil, K., Borzęcka, E., Jankowicz-Cieślak, J., Gawroński, P., … & Bolibok-Brągoszewska, H. (2020). Deep sampling and pooled amplicon sequencing reveals hidden genic variation in heterogeneous rye accessions. BMC Genomics21(1), 1-16.

    10. Kaźmińska, K., Hallmann, E., Korzeniewska, A., Niemirowicz-Szczytt, K., & Bartoszewski, G. (2020). Identification of Fruit-Associated QTLs in Winter Squash (Cucurbita maxima Duchesne) Using Recombinant Inbred Lines. Genes11(4), 419.

    11. Merheb, J., Pawełkowicz, M., Branca, F., Bolibok-Brągoszewska, H., Skarzyńska, A., Pląder, W., & Chalak, L. (2020). Characterization of Lebanese Germplasm of Snake Melon (Cucumis melo subsp. melo var. flexuosus) Using Morphological Traits and SSR Markers. Agronomy10(9), 1293.

    12. Mielecki, J., Gawroński, P., & Karpiński, S. (2020). Retrograde signaling: Understanding the communication between organelles. Int J Mol Sci21(17), 6173.

    13. Osipowski, P., Pawełkowicz, M., Wojcieszek, M., Skarzyńska, A., Przybecki, Z., & Pląder, W. (2020). A high-quality cucumber genome assembly enhances computational comparative genomics. Mol Genet Genom295(1), 177-193.

    14. Pawełkowicz, M. E., Skarzyńska, A., Sroka, M., Szwacka, M., Pniewski, T., & Pląder, W. (2020). Effect of Transgenesis on mRNA and miRNA Profiles in Cucumber Fruits Expressing Thaumatin II. Genes11(3), 334.

    15. Rakoczy‐Trojanowska, M., Święcicka, M., Bakera, B., Kowalczyk, M., Stochmal, A., & Bolibok, L. (2020). Cocultivating rye with berseem clover affects benzoxazinoid production and expression of related genes. Crop Sci60(6), 3228-3246.

    16. Skarzyńska, A., Pawełkowicz, M., & Pląder, W. (2020). Genome-wide discovery of DNA variants in cucumber somaclonal lines. Gene736, 144412.

    17. Skoczowski, A., Przemieniecki, S. W., Oliwa, J., Kula-Maximenko, M., Rys, M., Stawoska, I., & Karpiński, S. (2020). Estimation of microbiological contamination of maize seeds using isothermal calorimetry. J Therm Anal Calorim142(2), 749-754.

    18. Stephani, M., Picchianti, L., Gajic, A., Beveridge, R., Skarwan, E., de Medina Hernandez, V. S., … & Dagdas, Y. (2020). A cross-kingdom conserved ER-phagy receptor maintains endoplasmic reticulum homeostasis during stress. Elife9, e58396.

    19. Święcicka, M., Dmochowska-Boguta, M., Orczyk, W., Grądzielewska, A., Stochmal, A., Kowalczyk, M., … & Rakoczy-Trojanowska, M. (2020). Changes in benzoxazinoid contents and the expression of the associated genes in rye (Secale cereale L.) due to brown rust and the inoculation procedure. PloS one15(5), e0233807.

    20. Tańska, M., Ogrodowska, D., Bartoszewski, G., Korzeniewska, A., & Konopka, I. (2020). Seed Lipid Composition of New Hybrids of Styrian Oil Pumpkin Grown in Poland. Agronomy10(8), 1104.

    21. Targonska-Karasek, M., Boczkowska, M., Podyma, W., Pasnik, M., Niedzielski, M., Rucinska, A., … & Rakoczy-Trojanowska, M. (2020). Investigation of obsolete diversity of rye (Secale cereale L.) using multiplexed SSR fingerprinting and evaluation of agronomic traits. J App Genet61(4), 513-529.

    22. Wlazło, A., Święcicka, M., Koter, M. D., Krępski, T., Bolibok, L., Stochmal, A., … & Rakoczy-Trojanowska, M. (2020). Genes ScBx1 and ScIgl—Competitors or Cooperators?. Genes11(2), 223.

  • 2019

    1. Barczak-Brzyżek, A. Brzyżek, G., Koter, M., Gawroński, P., Filipecki, M. (2019). Exposure to High-Intensity Light Systemically Induces Micro-Transcriptomic Changes in Arabidopsis thaliana Roots. Int J Mol Sci20(20), 5131.

    2. Bakera, B., Rakoczy-Trojanowska, M., Krajewski, M., Mokrzycka, M., Szeliga, M., & Tyrka, M. (2019). Analiza struktury genetycznej populacji składającej się z 510 form pszenicy zwyczajnej (Triticum aestivum L.) z wykorzystaniem markerów SSR SNP. Biuletyn IHAR, (285).

    3. Baranowski, Ł., Różańska, E., Sańko-Sawczenko, I., Matuszkiewicz, M., Znojek, E., Filipecki, M., … & Sobczak, M. (2019). Arabidopsis tonoplast intrinsic protein and vacuolar H+-adenosinetriphosphatase reflect vacuole dynamics during development of syncytia induced by the beet cyst nematode Heterodera schachtii. Protoplasma256(2), 419-429.

    4. Bernacki, M. J., Czarnocka, W., Rusaczonek, A., Witoń, D., Kęska, S., Czyż, J., … & Karpiński, S. (2019). LSD1‐, EDS1‐and PAD4‐dependent conditional correlation among salicylic acid, hydrogen peroxide, water use efficiency and seed yield in Arabidopsis thaliana. Physiol Plant165(2), 369-382.

    5. Bernacki, M. J., Czarnocka, W., Szechyńska-Hebda, M., Mittler, R., & Karpiński, S. (2019). Biotechnological Potential of LSD1, EDS1, and PAD4 in the Improvement of Crops and Industrial Plants. Plants8(8), 290.

    6. Holz, S., Kube, M., Bartoszewski, G., Huettel, B., & Büttner, C. (2019). Initial studies on cucumber transcriptome analysis under silicon treatment. Silicon11(5), 2365-2369.

    7. Kiełkiewicz, M., Barczak-Brzyżek, A., Karpińska, B., & Filipecki, M. (2019). Unravelling the Complexity of Plant Defense Induced by a Simultaneous and Sequential Mite and Aphid Infestation. International journal of molecular sciences20(4), 806.

    8. Matuszkiewicz, M., Koter, M. D., & Filipecki, M. (2019). Limited ventilation causes stress and changes in Arabidopsis morphological, physiological and molecular phenotype during in vitro growth. Plant Physiology and Biochemistry135, 554-562.

    9. Pawełkowicz, M., Pryszcz, L., Skarzyńska, A., Wóycicki, R. K., Posyniak, K., Rymuszka, J., … & Pląder, W. (2019). Comparative transcriptome analysis reveals new molecular pathways for cucumber genes related to sex determination. Plant reproduction32(2), 193-216.

    10. Pawełkowicz, M. E., Skarzyńska, A., Pląder, W., & Przybecki, Z. (2019). Genetic and molecular bases of cucumber (Cucumis sativus L.) sex determination. Molecular breeding39(3), 1-27.

    11. Yin, Z., Murawska, Z., Xie, F., Pawełkowicz, M., Michalak, K., Zhang, B., & Lebecka, R. (2019). microRNA response in potato virus Y infected tobacco shows strain-specificity depending on host and symptom severity. Virus research260, 20-32.

  • 2018

    1. Gawroński P., Jensen P.E., Karpiński S., Leister D., Scharff L.B. Pausing of Chloroplast Ribosomes Is Induced by Multiple Features and Is Linked to the Assembly of Photosynthetic Complexes. 2018. Plant Physiol. 176(3):2557-2569. doi: 10.1104/pp.17.01564.

    2. Pulido P., Zagari N., Manavski N., Gawronski P., Matthes A., Scharff L.B., Meurer J., Leister D. CHLOROPLAST RIBOSOME ASSOCIATED Supports Translation under Stress and Interacts with the Ribosomal 30S Subunit. Plant Physiol. 2018 177(4):1539-1554. doi: 10.1104/pp.18.00602

    3. Różańska E., Czarnocka W., Baranowski Ł., Mielecki J., Almeida Engler J., Sobczak M. 2018. Expression of both Arabidopsis γ-tubulin genes is essential for development of a functional syncytium induced by Heterodera schachtii. Plant Cell Rep. 2018 Sep;37(9):1279-1292. doi: 10.1007/s00299-018-2312-7. Epub 2018 Jun 12.

    4. Bernacki M.J., Czarnocka W., Witoń D., Rusaczonek A., Szechyńska-Hebda M., Ślesak I., Dąbrowska_Bronk J., and Karpiński S. 2018. ENHANCED DISEASE SUSCEPTIBILITY 1 (EDS1) affects development, photosynthesis, and hormonal homeostasis in hybrid aspen (Populus tremula L. ×P. tremuloides). J Plant Physiol. Apr 25;226:91-102. doi: 10.1016/j.jplph.2018.04.014

    5. Matuszkiewicz M., Koter M.D., Filipecki M. 2018. Limited ventilation causes stress and changes in Arabidopsis morphological, physiological and molecular phenotype during in vitro growth. Plant Physiol  Biochem. 2018 Feb;135:554-562. doi: 10.1016/j.plaphy.2018.11.003. Epub 2018 Nov 10.

    6. Słomnicka R., Olczak-Woltman H., Oskiera M., Schollenberger M., Niemirowicz-Szczytt K., Bartoszewski G. 2018. Genome analysis of Pseudomonas syringae pv. lachrymans strain 814/98 indicates diversity within the pathovar. Eur. J. Plant Pathol. 151: 663–676.

    7. Baranowski Ł., Różańska E., Sańko-Sawczenko I., Matuszkiewicz M., Znojek E., Filipecki M., Grundler F.M.W., Sobczak M. 2018. Arabidopsis tonoplast intrinsic protein and vacuolar H+-adenosinetriphosphatase reflect vacuole dynamics during development of syncytia induced by the beet cyst nematode Heterodera schachtii. Protoplasma. 2018 Sep 5. doi: 10.1007/s00709-018-1303-4. [Epub ahead of print]

    8. Matuszkiewicz M., Sobczak M., Cabrera J., Escobar C., Karpiński S., Filipecki M. 2018. The Role of Programmed Cell Death Regulator LSD1 in Nematode-Induced Syncytium Formation. Front Plant Sci. 2018 Mar 19;9:314. doi: 10.3389/fpls.2018.00314.

    9. Koter M.D., Święcicka M., Matuszkiewicz M., Pacak A., Derebecka N., Filipecki M. 2018. The miRNAome dynamics during developmental and metabolic reprogramming of tomato root infected with potato cyst nematode. Plant Sci. 268:18-29. doi: 10.1016/j.plantsci.2017.12.003.

    10. Malinowski R. Fry S.C., Zuzga S., Wiśniewska A., Godlewski M., Noyszewski A., Barczak-Brzyżek A., Malepszy S., Filipecki M. 2018. Developmental expression of the cucumber Cs-XTH1 and Cs-XTH3 genes, encoding xyloglucan endotransglucosylase/hydrolases, can be influenced by mechanical stimuli. Acta Physiol Plantarum 40(7):130. DOI: 10.1007/s11738-018-2707-7

    11. Mróz Y.L., Eves-van den Akker S., Bernat A., Skarzyńska A., Pryszcz L., Olberg M., Havey M.J., Bartoszewski G. 2018. Transcriptome analyses of mosaic (MSC) mitochondrial mutants of cucumber in a highly inbred nuclear background. G3: Genes Genomes Genetics 8: 953-965.

    12. Słomnicka R., Olczak-Woltman H., Korzeniewska A, Gozdowski D., Niemirowicz-Szczytt K, Bartoszewski G. 2018. Genetic mapping of psl locus and quantitative trait loci for angular leaf spot resistance in cucumber (Cucumis sativus L.). Mol. Breed. 38:111.

    13. Kaźmińska K., Hallmann E., Rusaczonek A., Korzeniewska A., Sobczak M., Filipczak J., Kuczerski K.S., Steciuk J., Sitarek-Andrzejczyk M., Gajewski M., Niemirowicz-Szczytt K. 2018. Genetic mapping of ovary colour and quantitative trait loci for carotenoid content in the fruit of Cucurbita maxima Duchesne. Mol. Breed. 38:114.

    14. Targońska-Karasek M., Bolibok-Brągoszewska H., Oleniecki T., Sharifova S., Kopania M., Rakoczy-Trojanowska M. 2018. Verification of taxonomic relationships within the genus Secale (Poaceae: Pooideae: Triticeae) based on multiple molecular methods. Phytotaxa 383 (2). doi: http://dx.doi.org/10.11646/phytotaxa.383.2.1

    15. Bernacki M.J., Czarnocka, W., Rusaczonek A., Witoń D., Kęska S., Czyż J., Szechyńska-Hebda M., and Karpiński. 2018. S. LSD1, EDS1 and PAD4-dependent conditional correlation among salicylic acid, hydrogen peroxide, water use efficiency, and seed yield in Arabidopsis thaliana. Physiol Plant. Nov 20. doi: 10.1111/ppl.12863.

    16. Szwacka M, Pawełkowicz M, Skarzyńska A, Osipowski P, Wojcieszek M, Przybecki Z, Pląder W. Biological significance, computational analysis, and applications of plant microRNAs. 2018 Acta Physiologiae Plantarum 40:8:146 doi.org/10.1007/s11738-018-2718-

    17. Borzęcka E., Hawliczek-Strulak A., Bolibok L., Gawroński P., Tofil K., Milczarski P., Stojałowski S., Myśkw B., targońska-Karasek M., Grądzielewska A., Smolik M., Kilian A., Bolibok-Brągoszewska H. Effective BAC clone anchoring with genotyping –by-sequencing and Diversity Arrays Technology in a large genome cereal rye. Scientific Reports. 2018.8:8428

  • 2017

    1. Barczak-Brzyżek A., Kiełkiewicz M., Kot K., Górecka M., Karpińska B., Filipecki M. 2017. Abscisic Acid Insensitive 4 transcription factor is an important player in Arabidopsis thaliana response to the two-spotted spider mite (Tetranychus urticae Koch) feeding. Experimental and Applied Acarology 73:317-326, doi 10.1007/s10493-017-0203-1., 35 pkt, A, IF= 1,76.
    2. BARCZAK-BRZYŻEK A.K., KIEŁKIEWICZ M., GAWROŃSKI P., KOT K., FILIPECKI M., KARPIŃSKA B. 2017. Cross-talk between high light stress and plant defence to the two-spotted spider mite in Arabidopsis thaliana. Experimental and Applied Acarology  Oct;73(2):177-189. doi: 10.1007/s10493-017-0187-x. Epub 2017 Nov 8. 35 pkt, A, IF= 1,76.
    3. BIAŁASEK M., GÓRECKA M., MITTLER R., KARPIŃSKI S. Evidence for the Involvement of Electrical, Calcium and ROS Signaling in the Systemic Regulation of Non-Photochemical Quenching and Photosynthesis. Plant and Cell Physiology. 2017. Feb 10. doi: 10.1093/pcp/pcw232. [Epub ahead of print]. 40 pkt, A, IF= 4,76.
    4. CZARNOCKA W., VAN DER KELEN K., WILLEMS P., SZECHYŃSKA-HEBDA M., SHAHNEJAT-BUSHEHRI S., BALAZADEH S., RUSACZONEK A., MUELLER-ROEBER B., VAN BREUSEGEM F., KARPIŃSKI S. 2017. The dual role of LESION SIMULATING DISEASE 1 as a condition-dependent scaffold protein and transcription regulator. Plant and Cell Environment Nov;40(11):2644-2662. doi: 10.1111/pce.12994. Epub 2017 Jul 26. 45 pkt., A, IF= 6,173.
    5. GROSZYK J., KOWALCZYK M., YANUSHEVSKA Y., STOCHMAL A., RAKOCZY-TROJANOWSKA M. and ORCZYK W. 2017. Identification and VIGS-based characterization of Bx1 ortholog in rye (Secale cereale L.). PLoS One 12(2): e0171506. 40 pkt., A, IF= 2,806.
    6. KAŹMIŃSKA K., SOBIESZEK K., TARGOŃSKA-KARASEK M., KORZENIEWSKA A., NIEMIROWICZ-SZCZYTT K., BARTOSZEWSKI G. 2017. Genetic diversity assessment of a winter squash and pumpkin (Cucurbita maxima Duchesne) germplasm collection based ongenomic Cucurbita-conserved SSR markers. Scientia Horticulturae 219:37-44. 35 pkt, A, IF= 1,624.
    7. Koter M.D., Święcicka M., Matuszkiewicz M., Pacak A., Derebecka N., Filipecki M. (2018) The role of miRNAs in developmental and metabolic reprogramming of tomato root infected with potato cyst nematode. Plant Science  268: 18–29, doi 10.1016/j.plantsci.2017.12.003. 35 pkt, A, IF= 3,437.
    8. MILCZARSKI P., MASOJĆ P., KRAJEWSKI P., STOCHMAL A., KOWALCZYK M., ANGELOV M., SCHOLLENBERGER M., WAKULIŃSKI W., BANASZAK Z., BANASZAK K., RAKOCZY-TROJANOWSKA M. 2017. QTL mapping for benzoxazinoid content, preharvest sprouting, α-amylase activity, and leaf rust resistance in rye (Secale cereale L.). PLoS One 12(12): e0189912. 40 pkt., A, IF= 2,806.
    9. OLIVEIRA C.M.G., BLOK V., NEILSON R., MRÓZ T., ROBERTS D. 2017. Hydrolysis probe-based PCR for detection of Pratylenchus crenatusP. neglectus and P. penetrans. Nematology, 19:81-91. 25 pkt, A, IF = 1,162.
    10. OSKIERA M., SZCZECH M., STĘPOWSKA A., SMOLIŃSKA U., BARTOSZEWSKI G. 2017. Monitoring of Trichoderma species in agricultural soil in response to application of biopreparations. Biological Control 113:65-72. 35 pkt, A, IF=  2,307.
    11. RAKOCZY-TROJANOWSKA M., KRAJEWSKI P., BOCIANOWSKI J., SCHOLLENBERGER M., WAKULIŃSKI W., MILCZARSKI P., MASOJĆ P., TARGOŃSKA-KARASEK M., BANASZAK Z., BANASZAK K., BRUKWIŃSKI W., ORCZYK W. and KILIAN A. 2017b. Identification of single nucleotide polymorphisms associated withbrown rust resistance, α-amylase activity and pre-harvest sprouting in rye (Secale cereale L.). Plant Molecular Biology Reporter 35: 366–378. 40 pkt, A, IF= 1,93.
    12. SŁOMNICKA R., OLCZAK-WOLTMAN, OSKIERA M., SCHOLLENBERGER M., NIEMIROWICZ-SZCZYTT K., BARTOSZEWSKI G. 2017. Genome analysis of Pseudomonas syringae pv. lachrymans strain 814/98 indicates diversity within the pathovar. European Journal of Plant Pathology //doi.org/10.1007/s10658-017-1401-8. 30 pkt, A, IF= 1,47.
    13. SZECHYŃSKA-HEBDA M., LEWANDOWSKA M., KARPIŃSKI S. 2017. Electrical Signaling, Photosynthesis and Systemic Acquired Acclimation. Frontiers in Physiology Sep 14;8:684. doi: 10.3389/fphys.2017.00684. eCollection 2017. 35 pkt, A, IF= 4,134.
    14. Święcicka M., Skowron W., Cieszyński P., Dąbrowska-Bronk J., Matuszkiewicz M., Filipecki M., Koter M.D. 2017. The suppression of tomato defence response genes upon potato cyst nematode infection indicates a key regulatory role of miRNAs. Plant Physiology and Biochemistry 113:51-55, doi 10.1016/j.plaphy.2017.01.026. 35 pkt, A, IF= 2,7.
    15. TARGOŃSKA-KARASEK M., BOLIBOK-BRĄGOSZEWSKA H., RAKOCZY-TROJANOWSKA M. 2017. DArTseq genotyping reveals high genetic diversity of polish rye inbred lines. Crop Science 57(4): 1906-1915. 35 pkt, A, IF= 1,62.
    16. YIN Z., XIE F., MICHALAK K., PAWEŁKOWICZ M., ZHANG B., MURAWSKA Z., LEBECKA R., ZIMNOCH‐GUZOWSKA E. 2017. Potato cultivar Etola exhibits hypersensitive resistance to PVYNTN and partial resistance to PVYZ-NTN and PVYN‐Wi strains and strain‐specific alterations of certain host miRNAs might correlate with symptom severity. Plant Pathology 66, 4, 539 – 550, doi:10.1111/ppa.12599. 30 pkt, A, IF= 1,47.
  • 2016

    1. DĄBROWSKA-BRONK J., KOMAR D.N., RUSACZONEK A., KOZŁOWSKA-MAKULSKA A., SZECHYŃSKA-HEBDA M., KARPIŃSKI S. 2016. β-carbonic anhydrases and carbonic ions uptake positively influence Arabidopsis photosynthesis, oxidative stress tolerance and growth in light dependent manner. Journal of Plant Physiology., Sep 20;203:44-54. doi: 10.1016/j.jplph.2016.05.013, IF=2,971, 35 pkt, ISSN: 0176-1617
    2. FILIPECKI M., ŚWIĘCICKA M., SKOWRON W., CIESZYŃSKI P., KOTER M.D. 2016. Nematode induced plant miRNA dynamics indicate new targets for building biotechnological resistance to parasitic nematodes. New Biotechnology 33S, S1-S213. dx.doi.org/10.1016/j.nbt.2016.06.1268, IF=3,199, 30 pkt, ISSN: 1871-6784
    3. GAWROŃSKI P., PAWEŁKOWICZ M., TOFIL K., USZYŃSKI G., SHARIFOVA S., AHLUWALIA S., TYRKA M., WĘDZONY M., KILIAN A., BOLIBOK-BRĄGOSZEWSKA, H. 2016. DArT Markers Effectively Target Gene Space in the Rye Genome. Frontiers in Plant Science (7): 1600; doi:10.3389/fpls.2016.01600, IF = 4,495, 40 pkt MNiSW
    4. GILROY S., BIAŁASEK M., SUZUKI N., GÓRECKA M., DEVIREDDY A.R., KARPIŃSKI S., MITTLER R. 2016. ROS, calcium and electrical signals: key mediators of rapid systemic signalling in plants. Plant Physiol. 2016 Jul;171(3):1606-15. doi: 10.1104/pp.16.00434, IF= 6,280, 45pkt, ISSN: 0032-0889
    5. KULASEK M., BERNACKI M.J., CISZAK K., WITOŃ D., KARPIŃSKI S. 2016. Contribution of PsbS Function and Stomatal Conductance to Foliar Temperature in Higher Plants. Plant Cell Physiol. 2016 Jul;57(7):1495-1509, IF = 4,319, 40 pkt, ISSN: 0032-0781
    6. ORACZ K., KARPIŃSKI S. Phytohormones Signaling Pathways and ROS Involvement in Seed Germination. Frontiers in Plant Science. 2016 Jun 15;7:864. doi: 10.3389/fpls.2016.00864. eCollection 2016, IF = 4,495, 40 pkt, ISSN: 1664-462X
    7. PAWEŁKOWICZ M., ZIELIŃSKI K., ZIELIŃSKA D., PLĄDER W., YAGI K., WOJCIESZEK M., SIEDLECKA E., BARTOSZEWSKI G., SKARZYNSKA A., PRZYBECKI, Z. 2016. Next generation sequencing and omics in cucumber (Cucumis sativus L.) breeding directed research. Plant Science 242: 77-88. doi:10.1016/j.plantsci. 2015.07.02, IF = 3,362, 35 pkt, ISSN: 0168-9452
    8. RAKOCZY-TROJANOWSKA M., ORCZYK W., KRAJEWSKI P., BOCIANOWSKI J., STOCHMAL A., KOWALCZYK M. ScBx gene based association analysis of hydroxamate content in rye (Secale cereale L.). J. Appl. Genet. 57:1-9, IF=1,929, 20 pkt, ISSN:  1234-1983
    9. SZECHYŃSKA-HEBDA M., CZARNOCKA W., HEBDA M., BERNACKI M.J., KARPIŃSKI S. 2016. PAD4, LSD1 and EDS1 regulate drought tolerance, plant biomass production, and cell wall properties. Plant Cell Rep., Mar; 35(3):527-39. doi: 10.1007/s00299-015-1901-y, IF= 3,088, 35 pkt, ISSN: 0721-7714
    10. TARGOŃSKA M., BOLIBOK-BRĄGOSZEWSKA H, RAKOCZY-TROJANOWSKA M. 2016. Assessment of genetic diversity in Secale cereale based on SSR markers. Plant Mol. Biol. Rep 34(1): 37-51, IF=2,304, 25 pkt, ISSN: 0735-9640
    11. WITOŃ D., GAWROŃSKI P., CZARNOCKA W., ŚLESAK I., RUSACZONEK A., SUJKOWSKA-RYBKOWSKA M., BERNACKI M.J., DĄBROWSKA-BRONK J., TOMSIA N., SZECHYŃSKA-HEBDA M., KARPIŃSKI S. 2016. Mitogen activated protein kinase 4 (MPK4) influences growth in Populus tremula L. x tremuloides. Env. and Experimental Botany, 130, 189-205, IF= 3,712, 40 pkt, ISSN: 0098-8472
    12. YIN Z., XIE F., MICHALAK K., PAWEŁKOWICZ M., ZHANG B., MURAWSKA Z., LEBECKA R., ZIMNOCH‐GUZOWSKA E. 2016. Potato cultivar Etola exhibits hypersensitive resistance to PVYNTN and partial resistance to PVYZ‐NTN and PVYN‐Wi strains and strain‐specific alterations of certain host miRNAs might correlate with symptom severity. Plant Pathology. doi:10.1111/ppa.12599, IF= 2,383, 35 pkt, ISSN: 0032-0862

Prace naukowe realizowane w KGHiBR

  • Prace doktorskie

    2024

    Michał Wojcieszek – Składanie, adnotacja i porównanie genomów mutantów chemicznych ogórka (Cucumis sativus L.). 07.02.2024 

    2023

    Anna Barczak-Brzyżek – Chloroplast retrograde control of miRNA expression in response to high light stress. 07.09.2023

    2022

    Agnieszka Skarzyńska – Genomika porównawcza linii ogórka Cucumis sativus L. uzyskanych w wyniku transgenezy oraz regeneracji in vitro. 04.07.2022

    2021

    Karolina Kaźmińska – Analiza zmienności i identyfikacja QTL dla wybranych cech owoców dyni olbrzymiej (Cucurbita maxima Duchesne). 18.03.2021

    2020

    Maciej Jerzy Bernacki – Biotechnologiczne aspekty śmierci komórki zależnej od białek LSD1, EDS1 i PAD4 u Populus tremula x tremuloides oraz Arabidopsis thaliana17.07.2020.

    Mateusz Matuszkiewicz – Regulatory programowanej śmierci komórki a reakcja rośliny na nicienie pasożytnicze. 17.07.2020.

    2019

    Paweł Osipowski – Składanie, adnotacja i genomika porównawcza sekwencji genomów linii B10 ogórka. 22.06.2019.

    Małgorzata Targońska – Ocena zróżnicowania genetycznego w rodzaju Secale z wykorzystaniem różnych rodzajów markerów molekularnych. 28.04.2019.

    Renata Słomnicka – Wybrane aspekty genetycznego podłoża odporności ogórka (Cucumis sativus L.) na kanciastą plamistość wywoływaną przez Pseudomonas syringae pv. lachrymans28.03.2019.

    2018

    Marcin Olszak – Opracowanie podstaw metodycznych biotechnologicznego wykorzystania indukowanych totipotencjalnych komórek macierzystych ogórka. 28.03.2018.

    Damian Witoń – Rola kinazy aktywowanej mitogenami 4 (MPK4) w regulacji wzrostu, rozwoju i odpowiedzi na stresy abiotyczne w topoli Populus tremula x tremuloides. 14.03.2018.

    2017

    Beata Bakera – Analiza strukturalna i ekspresyjna wybranych genów kodujących biosyntezę cyklicznych kwasów hydroksymowych u żyta zwyczajnego (Secale cereale L.). 29.09.2017.

    Tomasz Mróz – Analiza strukturalna genomu mitochondrialnego linii B i identyfikacja genów ulegających specyficznej ekspresji u mutantów mitochondrialnych MSC ogórka (Cucumis sativus L.). 12.07.2017.

    Konrad Zieliński – Podstawy metodyczne transformacji ogórka wysokocząsteczkowym DNA. 29.06.2017.

    2015

    Kohei Yagi – Molecular cytogenic and chromosome evolution analyses within the genus Cucumis22.12.2015

    2014

    Magdalena Górecka – Między- i wewnątrzkomórkowe sygnały regulujące ekspresję peroksydazy askorbinianowej 2 oraz odpowiedzi aklimatyzacyjne i obronne u roślin wyższych (praca doktorska wykonana w KGHiBR i obroniona w IBB PAN, Warszawa). 14.09.2014

    Paweł Burdiak – Charakterystyka funkcjonalna rodziny kinaz receptoropodobnych bogatych w cysteinę (CRK) u Arabidopsis thaliana (praca doktorska wykonana w KGHiBR i obroniona w IBB PAN, Warszawa) 19.08.2014

    Piotr Gawroński – Molekularna, fizjologiczna i bioinformatyczna analiza sygnałów komórkowych regulujących odpowiedzi na stresy biotyczne i abiotyczne u roślin wyższych (praca doktorska wykonana w KGHiBR i obroniona w IBB PAN, Warszawa). 17.06.2014

    Cezary Kowalczuk – Analiza funkcjonalna sekwencji różnicujących linie ogórka (Cucumis sativus L.) o odmiennych typach płci. 23.04.2014

    2013

    Weronika Wituszyńska – Genetyczne oraz molekularne mechanizmy kontrolujące programowaną śmierć komórki oraz przystosowanie roślin w odpowiedzi na stresy abiotyczne (praca doktorska wykonana w KGHiBR i obroniona w IBB PAN, Warszawa). 13.06.2013

    2011

    Magdalena Guzowska-Nowowiejska – Dynamika transkryptomu chloroplastowego ogórka (Cucumis sativus L.) w warunkach stresów abiotycznych. 26.01.2011

    Aneta Hromada-Judycka – Analiza subtrakcyjna GDDSC reakcji niedojrzałych zarodków żyta ozimego (Secale cereale L.) w kulturze in vitro13.04.2011

    Rafał Wóycicki – Sekwencjonowanie i adnotacja strukturalna genomu jądrowego ogórka (Cucumis sativus L.). 25.05.2011.

    Monika Dobrzyńska – Haploidalne kultury zawiesinowe ogórka – otrzymywanie i wykorzystanie w biotechnologii roślin. 15.06.2011

    Anna Hawliczek-Strulak – Identyfikacja markerów molekularnych genów przywracających płodność oraz charakterystyka locus Rfo w wybranych materiałach Raphanus sativus L. 14.12.2011

    2010

    Magdalena Święcicka – Analiza ekspresji genów indukowanych w korzeniach pomidora porażonych mątwikiem ziemniaczanym. 03.03.2010

    Magdalena Czarny – Analiza funkcjonalna wybranych genów uczestniczących w metabolizmie wtórnym pomidora i indukowanych przez mątwika ziemniaczanego [Globodera rostochiensis (Wollenweber) Behrens]. 24.11.2010

    2009

    Joanna Dąbrowska-Bronk – Próba identyfikacji funkcji potencjalnych składników mechanizmu przekazywania sygnałów po infekcji korzeni pomidora przez mątwika ziemniaczanego. 04.11.2009

    2008

    Anna Gruszczyńska – Analiza molekularna reakcji niedojrzałych zarodków żyta ozimego (Secale cereale L.) w kulturze in vitro ze szczególnym uwzględnieniem genów związanych z somatyczną embriogenezą 01.10.2008.

    2006

    Wojciech Gutman – Konstrukcja i mapowanie biblioteki BAC u ogórka (Cucumis sativus L.). 20.09. 2006.

    Ewa Siedlecka
     – Analiza DSC linii ogórka (Cucumis sativus L.) różniących się płcią. 6.12.2006.

    Helena Olczak-Woltman
     – Podstawy genetyczne hodowli odpornościowej ogórka (Cucumis sativus L.) na bakteryjną kanciastą plamistość (Psuedomona syringae pv. lachrymans Young et al.). 17.10.2006.

    2005

    Anita Wiśniewska – Analiza molekularna wybranych genów ogórka (Cucumis sativus L.) ulegających ekspresji podczas embriogenezy somatycznej. 23.03.2005.

    Justyna Witkowicz – AFLP tagging genów ogórka (Cucumis sativus L). 8.07.2005.

    Monika Delis – Optymalizacja metod transformacji papryki (Capsicum annuum L.). 8.07.2005.

    2004

    Magdalena Kowalczyk – Analiza porównawcza produktów ekspresji genów w pąkach kwiatowych ogórka (Cucumis sativus L.). 09.07.2004.

    Hanna Bolibok – Analiza molekularna reakcji w kulturze in vitro niedojrzałych kwiatostanów żyta ozimego (Secale cereale L.) przy użyciu markerów mikrosatelitarnych. 06.12.2004.

    Sabina Zuzga – Metody transformacji ogórka (Cucumis sativus L.) w modelu cytokininowym embriogenicznej kultury zawiesinowej. 06.12.2004.

    Robert Malinowski – Analiza udziału ekspresji genów endotransglikozylaz/hydrolaz ksyloglukanu (XHT) w embriogenezie somatycznej ogórka (Cucumis sativus L.). 20.10.2004.

    2003

    Joanna Sztangret – Podstawy analizy genetycznej zawartości związków karotenoidowych w owocach dyni olbrzymiej (Cucurbita maxima Duch.). Perspektywy wykorzystania mieszańców F1. 10.07.2003.

  • Prace habilitacyjne

    2016

    Hanna Bolibok-Brągoszewska  – Opracowanie markerów molekularnych, ich charakterystyka oraz zastosowanie do konstrukcji map genetycznych bardzo wysokiej gęstości i poznania struktury zróżnicowania genetycznego żyta (Secale cereale L.). 24.06.2016
    dr hab. nauk biologicznych, dyscyplina biotechnologia, Rada Wydziału Biologii i Biotechnologii, UMCS Lublin

    2011

    Maria Szwacka – Właściwości linii transgenicznych ogórka (Cucumis sativus L.) wytwarzających taumatynę. 26.10.2011
    dr hab. nauk rolniczych, WOBiAK SGGW w Warszawie

    2008

    Marcin Filipecki – Efekty metaboliczne stosowania zaawansowanej biotechnologii u roślin uprawnych na przykładzie ogórka. 27.03.2008
    dr hab. nauk biologicznych w zakresie biotechnologii, Wydział Nauk o Żywności, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

    2007

    Grzegorz Bartoszewski – Organizacja i zmienność genomu mitochondrialnego ogórka (Cucumis sativus L.). 12.12.2007
    dr hab. nauk biologicznych w zakresie biotechnologii, Wydział Biologii i Nauk o Ziemi, UMCS Lublin

    2006

    Wojciech Pląder – Sequencing and analysis of cucumber (Cucumis sativus L.) chloroplast genome. 1.12.2006
    dr hab. nauk biologicznych w zakresie biotechnologii, Uniwersytet im. Adama Mickiewicza w Poznaniu

    2004

    Wojciech Burza – Niektóre, ważne dla biotechnologii, aspekty sterowania procesem morfogenezy w kulturze in vitro roślin 08.06.2004
    dr hab. nauk biologicznych w zakresie biotechnologii, Wydział Nauk o Żywności Akademii Rolniczej we Wrocławiu.